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pKD3 pKD46 pCP20大肠杆菌基因敲除实验步骤-----供参考
2026-05-05
- 一、 菌株与质粒准备
- 实验菌株:大肠杆菌(如MG1655、BW25113等)
- 辅助质粒:- pKD46 :表达λ Red重组酶(Exo、Bet、Gam),温度敏感型复制子,氨苄抗性
- pKD3 :氯霉素抗性模板质粒,需在pir⁺菌株中保藏
- pCP20 :表达FLP重组酶,温度敏感型复制子,氨苄/氯霉素双抗性
- 试剂:- 抗生素:氨苄青霉素(Amp, 100 mg/mL)、氯霉素(Cm, 25 mg/mL)
- 10% L-阿拉伯糖(诱导Red重组酶表达)
- 无抗LB液体/固体培养基、含相应抗生素的LB培养基
- 高保真DNA聚合酶、PCR引物、DpnI限制性内切酶
- 感受态制备试剂(10%甘油、预冷的超纯水)
- 2. 引物设计
- 需要设计一对敲除引物,结构如下:
- 上游引物(5'→3'):
- [靶基因同源臂(36-50 bp)] + CAGTCGTAGGCTGATCAGCGG
- 下游引物(5'→3'):
- [靶基因反向互补同源臂(36-50 bp)] + AGTTCCTATACTTTCTAGAGAATAGGAACTTC
- 原理:3'端序列用于扩增pKD3上的 FRT-Cm-FRT 片段,5'端的同源臂用于后续和大肠杆菌基因组发生同源重组。
- 二、:以pKD3为模板,PCR扩增抗性片段
| PCR反应体系(50μL)组分 |
体积 |
| 10×高保真缓冲液 |
5 μL |
| dNTPs(2.5 mM each) |
4 μL |
| 上游引物(10 μM) |
2 μL |
| 下游引物(10 μM) |
2 μL |
| pKD3质粒模板(10-50 ng/μL) |
1 μL |
| 高保真DNA聚合酶 |
0.5 μL |
| ddH₂O |
50 μL |
| |
|
- PCR程序plaintext
- 95℃ 预变性 3 min
- 95℃ 变性 30 s
- 55-60℃ 退火 30 s (根据引物Tm调整)
- 72℃ 延伸 1 min/kb (pKD3上的Cm片段约1.1 kb,延伸1.5 min即可)
- 重复30个循环
- 72℃ 终延伸 5 min
- 3. PCR产物处理- 用DpnI酶切PCR产物 1 h(37℃),消化模板质粒pKD3,避免后续实验中质粒污染
- -用PCR纯化试剂盒回收片段,洗脱至30 μL ddH₂O中,-20℃保存备用
- 三、Step 2:制备表达pKD46的大肠杆菌感受态
- 1. 将pKD46转化至你的目标大肠杆菌菌株,涂布于含Amp(100 μg/mL)的LB平板,30℃培养过夜(pKD46的复制子在37℃不稳定,必须30℃培养)
- 2. 挑取单菌落接种于5 mL LB(含Amp 100 μg/mL),30℃、220 rpm摇至OD₆₀₀≈0.4-0.6
- 3. 加入L-阿拉伯糖(终浓度10 mM),继续30℃摇1 h,诱导Red重组酶表达
- 4. 冰上预冷30 min,4℃ 4000 g离心10 min收集菌体
- 5. 用预冷的10%甘油洗涤菌体3次,最后重悬于100 μL 10%甘油中,即为感受态细胞,现制现用
- 四、Step 3:电转抗性片段,筛选重组菌株
- 1. 取50 μL感受态细胞,加入10-20 μL纯化后的PCR片段,轻轻混匀
- 2. 转移至预冷的电转杯(0.2 cm),电转参数:2.5 kV、25 μF、200 Ω
- 3. 立即加入1 mL无抗LB,37℃、220 rpm复苏培养1 h
- 4. 取100-200 μL菌液涂布于含Cm(25 μg/mL)的LB平板,37℃培养过夜
- 5. 挑取单菌落,用PCR验证抗性片段是否正确替换了靶基因(用基因组外侧的验证引物扩增)
- 五、Step 4:去除FRT位点间的氯霉素抗性标记(无痕化)
- 1. 将验证正确的重组菌株接种于无抗LB,37℃培养至OD₆₀₀≈0.4,制备感受态细胞
- 2. 转化pCP20质粒,涂布于含Amp(100 μg/mL)的LB平板,30℃培养过夜(pCP20为温度敏感型,需30℃培养)
- 3. 挑取单菌落接种于无抗LB,42℃摇菌过夜(高温诱导FLP重组酶表达,同时消除pCP20质粒)
- 4. 划线分离单菌落,分别点在无抗LB、含Cm的LB、含Amp的LB平板上- 正确的菌株:在无抗LB上生长,在Cm和Amp平板上不生长
- 5. 用基因组外侧引物PCR验证抗性标记已被切除,仅保留单个FRT位点
- 六、关键注意事项&避坑指南
- 1. pKD46和pCP20的温度控制:- 保藏/扩增必须在30℃进行,37℃会丢失质粒
- - 诱导重组酶或消除质粒时,需按实验步骤切换温度
- 2. DpnI处理的必要性:pKD3质粒模板必须被DpnI完全消化,否则会出现假阳性抗性菌落
- 3. Red重组效率:- 电转时的感受态细胞必须新鲜制备,且OD值严格控制在0.4-0.6
- - 阿拉伯糖诱导时间不宜过长,避免菌体死亡
- 4. 抗性标记残留验证:- 抗性切除后,必须同时做Cm和Amp的抗性平板验证,确保无质粒残留
- - PCR产物建议测序确认,避免发生非特异性重组


